WB β-actin的一些实验经验

经历了一个多月接近两个月的挣扎,可算是把WB的蛋白结果做出来了(个人觉得还蛮好看的),为了3张图,包括从前期养细胞提取蛋白什么的,整整花了快3个多月……实在太不容易了
为此,我把个人的一些小经验总结下,看看其他战友们有没有类似情况的,说不定会帮得上忙
1.先来张我第一次做内参的图……一个词(惨不忍睹)

再对比下我小伙伴做的,差距,实在是太大了……我酸了(他说这是教科书式actin,我觉得确实如此,实在太好看了,整整齐齐一条带 很干净)


2.不过好在!经过小编的一番咨询实验室的师兄师姐以及小伙伴WB专家,可算是解决了膜“黑乎乎”不干净的问题了

那就是 1.二抗后没有洗膜,这是最最主要的问题所在(因为师姐给的流程里没有洗膜这一步……得怪我自己没有好好思考)按照我小伙伴的一句话就是“二抗是加强显色的,你不洗那就是终极加强”,所以从这次以后洗3次,每次15min
2.显色液加太多了……怪我没经验…(不过这是次要问题,在之后的实验我试过了。因为洗膜干净的话 加多了显色液其实影响并不大)
好了!本来以为可以开心一下了!想不到旧的问题解决了,新的问题又出现了!!!


每次都是两个条带……反复7次7天都是都是如此!
实在太痛苦了,以至于我都已经准备要放弃了……
还好我不甘心,坚持重新提取蛋白做第8次,第9次,第10次……越做越好看

还是有浅浅的其他条带,但是对于做了一个星期都是很丑的图的我已经超级无敌开心了!!

这是近期做出来的,虽然跟小伙伴还是有点点差距,但是对于我来说已经是很好好看了!
在无数失败到成功过程中我得到了以下几点经验
1.出现多条带,是蛋白降解了,后面我考虑在提取蛋白时侯加多了些蛋白酶抑制剂,加长10min让细胞充分裂解。果然条带好看了!这点真的超级重要!还有提取蛋白后要尽快加loading Buffer让蛋白变性,低温保存。不然又会有些降解的。
2.其实一开始图也不是特别干净,还有其他杂带,所以我考虑是不是封闭的问题,之前都是封闭后洗膜,每次15min.而后来我就改变了方法,封闭后洗1次膜,1min(为了保持一抗干净),然后直接加一抗过夜。从这以后,不管做内参还是做其他蛋白,膜都是很干净的。
(这时候想起来之前在帖子有老前辈说到一句话,印象很深刻:不要害怕实验出错,出了错才能让你更好地关注细节,而细节恰恰是决定成败的关键!)
然后
自从这个内参做好了,后面再做其他蛋白,都算是比较成功的,没有因为一些细节而失败的。想起来二哥说的:先苦后甜!哈哈哈哈深有体会!

不知道我有没有什么地方是说的不对,或者理解错误的。欢迎小伙伴们指出我的错误呀~
对了,我的大致流程是这样子的
1.养细胞 给药 加蛋白酶抑制剂和细胞裂解液裂解细胞
2.提取蛋白变性 跑电泳。(浓缩可以久一点)
3.转膜 4.脱脂奶粉封闭90min 5.直接加一抗,4℃孵育过夜 6.TBST洗膜3次,每次15min
7.加二抗,30min 8.洗膜3次,每次15min
9.显色
好啦~我去复习看书啦~
考研党
回复消息很慢,望小伙们谅解喔~
最后编辑于 2019-09-17 · 浏览 1.8 万