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protocol 分享|磁珠法纯化 DNA

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    您的案例《protocol 分享|磁珠法纯化 DNA》 经同行评议,被丁香园临床病例数据库收录。
收录时间 2025年5月27日
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发布于 2023-06-20 · 浏览 1174 · IP 浙江浙江
这个帖子发布于 1 年零 342 天前,其中的信息可能已发生改变或有所发展。

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简介

利用独特包埋的磁珠吸附 DNA,随后在特定溶液下洗脱从而达到分离纯化 DNA 的目的。

原理

独特包埋的磁珠,在一定条件下对核酸具有很强的亲和力,当用特定洗脱溶液洗涤时,其会释放吸附的 DNA,从而达到快速分离纯化核酸的目的。

用途

从组织、细胞或血液中快速提取 DNA;以及提取质粒 DNA。

材料与仪器

器材:磁力架、移液枪、微量离心机、涡旋仪、金属浴或水浴锅;

试剂:裂解液、磁珠、异丙醇、蛋白酶混合液、洗涤液 A、洗涤液 B、洗脱液、胰蛋白酶;

耗材:移液器枪头、离心管、组织或细胞、细胞刮、培养皿。

步骤

1. 样本处理:

组织样品:取新鲜或冷冻样本 40 mg,加入 400 μl 裂解液,研磨匀浆后,10 000 g 高速离心 5 min,取上清;将上清转移至新的离心管中,并加入 20 μl 蛋白酶混合液,涡旋振荡 10 sec,56 ℃ 孵育 10 min。

细胞样品:悬浮培养的细胞直接通过 500 g 离心 5 min 获取细胞沉淀;贴壁培养的细胞用 0.5% 胰蛋白酶消化或用细胞刮从培养皿中将细胞刮下,而后 500 g 离心 5 min 得细胞沉淀。在约含 5 × 106 个细胞的沉淀中依次加入 400 μl 裂解液和 20 μl 蛋白酶混合液,涡旋振荡 10 sec, 56 ℃ 孵育 10~30 min。

2. 将消化完毕的样本取出,置于离心管架上冷却到室温。另取一个空的离心管,加入 400 μl 裂解液和 20 μl 蛋白酶混合液作为阴性对照(可选)。每个管中依次加入 300 μl 异丙醇和 25 μl 磁珠,盖上管盖,上下颠倒离心管 5 次以混合均匀,涡旋振荡 1 min。

3. 然后静置 5~10 min,静置完毕涡旋振荡 30 sec,使磁珠均匀分布,与样品充分接触。重复此步骤一次。而后 12 000 g 离心 1 min,离心完毕将离心管置于磁力架上,静置 2 min,弃上清。

4. 加入 500~700 μl 洗涤液 A,涡旋振荡 10 sec,直至管内磁珠分布均匀。12 000 g 离心 15 sec,离心完毕将离心管置于磁力架上,静置 2 min,弃上清。

5. 重复步骤 4 两次。

6. 加入 500~700 μl 洗涤液 B,涡旋振荡 10 sec,直至管内磁珠分布均匀。12 000 g 离心 15 sec,离心完毕将离心管置于磁力架上,静置 2 min,弃上清。

7. 重复步骤 6 两到三次。

8.12 000 g 空离 30 sec,并用移液器小心地将管内残余液体吸出,打开管盖,室温干燥 2~5 min。

9. 每管加入 100 μl 洗脱液,用移液器吹吸磁珠-洗脱液混合物,以使磁珠均匀分布。65 ℃ 孵育 3~10 min。

10. 12 000 g 离心 15 sec,离心完毕将离心管置于磁力架上,静置 2 min 或直至液体变澄清。

将含有 DNA 的洗脱液转移至新的离心管中。24 hrs 内使用可储存在 2 ℃~8 ℃ 冰箱,长时间储存应置于 -20 ℃ 冰箱保存。

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注意事项

1. 磁珠较为昂贵,可以重复使用,切勿用过即扔。

2. 步骤 8 中,干燥时间最长不超过 5 min,磁珠表面失去光华即可,避免干燥过度,磁珠不易重悬。

常见问题

干燥过度,磁珠成团,不易重悬。


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最后编辑于 2023-06-20 · 浏览 1174

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