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HBMEC细胞的OGD/R模型失败

发布于 2020-07-04 · 浏览 3099 · 来自 iOS · IP 云南云南
这个帖子发布于 4 年零 303 天前,其中的信息可能已发生改变或有所发展。

实验步骤:

1、接种细胞:待皿中的细胞密度达到80%-90%,胰酶消化,细胞专用培养基ECM完全培养基终止消化,收集至离心管中,1000rpm,离心5分钟,弃上清,重悬混匀,得细胞母液。细胞计数,调整细胞浓度为2.5x104个/ml,100ul/孔种于96孔中,放于37度CO2培养箱中。

2、OGD损伤时间为0、3、6、9、12  单位(小时)

3、分组:正常组(0)、模型组(3、6、9、 12)

4、待96孔板中的细胞长至80%-90%,弃原培养液,正常组用DPBS清洗三遍,加入100ul/孔ECM完全培养基;模型组用DPBS清洗三遍,加入无糖DMEM培养基,加入100ul/孔无糖DMEM培养基。

5、打开MC-101缺氧小室,将完整的96孔板(没有弃去盖子),放入小室,检查封口是否平整,扣上扣件。打开进气管和出气管,以20L/min的流速放气五分钟,最后三十秒调至10L/min的流速,关闭出气孔。以10L/min的流速大概10秒钟左右,流量计中的珠子从10降至0,一动不动,表示缺氧小室气体已满,关闭进气孔,随后关掉阀门,喷洒酒精,放入培养箱,按照规定时间拿出。

6.取出符合时间的96孔板,弃去96孔中的培养液加入ECM完全培养,再加入20ul/孔的MTS,放入细胞培养箱孵育2小时,用酶标仪检测。

 

 

问题1:经过以下时间的缺糖缺氧,细胞没有损伤,怀疑小室氧气浓度没有降至1%左右,没有造成缺氧情况。

问题2:打开小室,打开管子,有气体冲出,是否可以排除漏气的原因。

问题3:原培养基(细胞专用培养基)不能完全去除,是否会有影响。

  

 

多谢指导!

最后编辑于 2022-10-09 · 浏览 3099

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