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请教用加尾法进行 microrna 的反转录和 qpcr

发布于 2023-07-13 · 浏览 988 · IP 浙江浙江
这个帖子发布于 1 年零 301 天前,其中的信息可能已发生改变或有所发展。

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Q:U6内参的扩增曲线和熔解曲线都很好,但一测miR就是都不行,扩增曲线出现平台期下降,熔解曲线单峰的情况很少,几乎都是双峰或宽峰,即使少数较尖锐的单峰熔解温度也很低,75-76度左右。

有必要做NRC吗?之前做了几组NTC发现存在引物二聚体的情况,但miR的上游引物基本就是全序列了,cDNA已经稀释到100倍了,引物10μM从0.6μL降到0.4μL了,提高退火温度基本没有改善,不知道还能怎么优化了,请教一下大家

A1:首先,您提到进行了负模板对照(NTC),发现存在引物二聚体的情况。这可能会导致假阳性的信号。您已经尝试稀释cDNA和调整引物浓度,但没有看到改善。这种情况下,考虑使用非反转录控制(NRC)来评估反转录过程中的污染情况,以确定是否存在其他因素导致结果不准确。

此外,您可以尝试以下优化步骤:

1. 确保您的实验条件和PCR反应体系是正确的,包括反应缓冲液、酶的浓度、模板量等。参考相关文献或厂家推荐的实验方案进行操作。

2. 检查反应温度和退火温度的优化,可能需要尝试不同的温度梯度。

3. 检查引物的设计和序列,确保引物与目标microRNA的互补性良好,并且没有二聚体倾向。

4. 考虑尝试其他反转录和扩增方法,例如使用不同的反转录酶或qPCR引物。


Q:请问,想用RNAi达到提高死亡率的效果,在干扰片段设计的时候,片段包含保守结构域,干扰效果会增强嘛?

A1:是的,这样其干扰效果就会增强。

A2:保守结构域对干扰效果有一定增强,但是要适量,过多保守域会影响干扰效果

A3:RNA干扰(RNAi)是一种通过抑制特定基因表达来实现功能研究或治疗的方法。干扰片段的设计对于RNAi的效果至关重要。包含保守结构域的干扰片段可能会增强RNAi的效果。保守结构域指的是在物种间高度保守的RNA序列或结构区域,其功能通常与基因的正常功能密切相关。通过干扰保守结构域,可以选择性地干扰目标基因,从而增强RNAi的效果。不过,干扰片段的设计还涉及其他因素,如选择适当的目标序列和优化片段的化学性质,这些因素也需要考虑以获得最佳的干扰效果。


Q:包涵体在离心时在上清还是沉淀部分?还是都有?

A1:包涵体离心后大部分都是在沉淀部分

A2:包涵体在离心时主要存在于以下几种情况:

1. 大部分包涵体会沉淀在离心管的沉淀部分。因为包涵体的密度一般大于上清液,在离心力作用下会迁移到管底部形成沉淀。

2. 也有一小部分包涵体可能悬浮在上清液中。这些包涵体的密度较小,或者包涵体颗粒较小,无法有效沉淀。

3. 如果包涵体与上清液的密度非常接近,则可能难以通过一次离心完全沉淀。这时包涵体会有一部分残留在上清液中。

4. 若离心条件不恰当,速度过快或者时间过短,也可能导致包涵体沉淀不完全,一定量悬浮在上清液中。

综上所述,包涵体离心后主要存在于沉淀部分,但根据包涵体本身性质和离心条件的不同,一小部分也可能悬浮在上清液中。需要优化离心条件,使包涵体尽量沉淀在管底。也可以多次离心以提高回收率。


Q:我用TSS法制备rosetta感受态,但是我配的1*TSS的PH调过了,我又用盐酸回调到6.5,请问是否会对感受态制备有影响?

A1:在其他没有影响的情况下,PH调回到6.5时对感受态制备没有什么影响。

A2:在制备Rosetta感受态时,pH值的调整对结果可能会产生影响。pH的改变可以影响蛋白质的结构和稳定性,进而影响感受态的形成。您使用盐酸将pH回调到6.5,这是一个较为中性的条件,可能有助于维持蛋白质的稳定性。然而,具体的影响还需要考虑其他实验参数和具体的蛋白质系统。


Q:求问一下hep3B细胞表达cccDNA和pg吗,检测了好几次都没检测到

A1:一般来说hep3B细胞不会表达cccDNA和pg。

A2:Hep3B细胞一般情况下不会表达C-C chemokine receptor type D (CCR4)蛋白和prostaglandin G/H synthase (PG)蛋白。然而,这仍然取决于实验条件和检测方法的选择。

如果您在Hep3B细胞中进行了CCR4或PG蛋白的表达试验,但没有检测到目标蛋白,可能有以下几个可能的原因:

1. 转染效率低:确保您使用的转染方法和载体选择适合Hep3B细胞,并且转染效率足够高。选择合适的转染试剂和优化转染条件,以提高转染效率。

2. 检测方法问题:检查您使用的抗体是否特异性良好,并且已经在其他细胞类型或组织中验证过。可能需要尝试不同的抗体,或者使用其他检测方法(例如免疫荧光染色、Western blot等)来确认蛋白的表达。

3. 表达时间点问题:确保您选择适当的时间点来检测蛋白表达。不同基因的表达动力学可能存在差异,可能需要在适当的时间点进行检测。

4. 细胞特异性问题:在进行实验之前,最好对CCR4和PG在Hep3B细胞中的表达进行文献调研,了解是否已经有相关研究报告表明在Hep3B细胞中有CCR4或PG的表达。

最后编辑于 2023-07-13 · 浏览 988

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