【求助】CFSE染色求助
我的详细步骤如下:
1.小鼠脱臼处死,浸酒精,取脾,放入预冷的1640中带回实验室。
2.200目滤网加5ml注射器芯研磨,每研磨几下用D-Hanks冲洗一次,直到滤网上只剩白膜。
3.1500转5min离心,弃上清,用ebioscience的红细胞裂解液1ml 轻轻吹打均匀,裂解 1min后加7mlPBS终止。
4.1500转5min离心,弃上清,加美天妮的分选buffer洗涤一次,离心弃上清。
5.按照美天妮磁珠分选流程(加抗体/加磁珠/过柱……这一步应该是没问题的,因为我用磁珠分选可以达到98%的纯度)。
6.invitrogen的CFSE染色:将18ulDMSO加入一小管CFSE中,得到5mM的CFSE。将1ulCFSE溶于2mlPBS中,得到2.5uM的CFSE工作液,将T细胞离心后加PBS制备成0.5ml的细胞悬液,与0.5mlCFSE工作液迅速混合均匀。(即染色浓度为1.25uM)。将T细胞悬液放置于37度水浴中10min,每2min轻摇一次。(invitrogen说明书中说要不含蛋白的PBS染色,所以我没有加BSA或者FBS。)
7.细胞悬液加5ml完全培养基,离心弃上清,再加5ml完全培养基,离心弃上清。(就是用5倍体积完全培养基洗2次)(有的说要用预冷的培养基,有的说要放置一会儿再离心,我是室温培养基直接离心可以吗?)
8.细胞沉淀确实能看出黄色来,染完立即做流式也有一个大峰,应该是染上了。
9.细胞在完全培养基中吹打成单细胞悬液(Gibco的1640培养基+10%Gibco胎牛血清+1%双抗+0.1%二巯基乙醇+1%丙酮酸钠+1ul/ml的BD的CD28),按照每孔3x10^5加入圆底96孔板,板是含1ul/mlCD3e的PBS 4度包被24h的。
3d以后能看到细胞是变大变圆的,但是CFSE就是一个大峰,问题究竟出在哪里?
最后编辑于 2022-10-09 · 浏览 2.7 万