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【原创】原代胶质细胞培养(小胶质、星形胶质)

药理及临床试验版版主 · 最后编辑于 2014-10-11 · IP 上海上海
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这个帖子发布于 10 年零 280 天前,其中的信息可能已发生改变或有所发展。
我看到本版求助原代细胞的帖子有几个,回答的好像没有详细的,故把前段时间做的实验步骤拿上来分享一下~
材料:24 h新生SD大鼠2只(可视情况变化),灭菌手术器械(刀片,剪刀,镊子),小培养皿,75 cm2培养瓶1个,离心管,移液管若干,多聚赖氨酸溶液(PLL,过滤),Gibco DMEM, 培养液(DMEM+10% FBS+1%双抗+1%谷氨酰胺)
步骤:(超净台操作)
1. 酒精棉球擦拭新生大鼠头部后,剪下;剪开头皮,用刀片划开颅骨,使用镊子夹取皮层
2. 将新鲜皮层放于盛DMEM的小培养皿中,剥去表面脑膜及血管(否则影响消化)
3. 剪碎皮层,将其转移入胰酶消化液(含0.1%DNA酶),置于37℃消化4 min,过程中可以吹打一次助消化
4. 待组织碎片发粘后,转移入离心管中,加3倍于消化液体积的培养液,离心1500 rpm 5 min
5. 弃上清,加入培养液吹打。
6. 将悬浮细胞转移至事先包被了PLL的培养瓶中(PLL包被0.5 h),轻摇匀后置于培养箱中。
7. 第2天更换培养液:将瓶中旧液轻轻倒掉,勿晃勿洗。
8. 继续培养数天,中间观察到培养液若发黄即换
9. 培养一周后,置摇床以200 rpm摇4 h后,取培养液于离心管中,2000 rpm 离心5 min,弃上清,加入培养液2-4 ml,吹打混匀,即得小胶质细胞,可计数进行后续实验
10. 原培养瓶中所剩细胞即为星形胶质细胞,胰酶消化后即可进行后续实验。
备注:1.实验中注意勿要污染
2.虽然不排除有少突胶质细胞,但实验证明操作所得细胞纯度符合要求
3.经验证,原培养瓶若加入培养液后不做处理,继续培养,过一段时间仍可摇下小胶质细胞
下面是刚种板不到24h的小胶质样子,时间再久一点会长得更好















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