实验Protocol|全流程实打实过表达载体构建

在进行对靶基因功能进行操作时,常常需要把靶基因进行gain of function 操作。其中利用的就是通过过表达靶基因,然后看因过表达靶基因后的表型变化来确定靶基因的功能。笔者在网上看了很多教程,质量参差不齐,而且很多教程把简单问题复杂化,比如特别是涉及酶切位点原则时:1.选用载体有的,而靶基因没有的酶切位点;2.选用酶切活性好的,避免✳标记的酶等等。其实,看完很多网上的教程,仍然一头雾水。现在笔者介绍一个简单、高效、通用的过表达构建。不需要考虑复杂的酶切位点,而且几乎所有靶基因过表达构建通用本教程。

克隆过程示意图
1. 第一步:选用ligation independent Cloning(LIC)的载体:addgene #30124,#30125(mCherrry),#30127(GFP),其中一个,根据自己的需求选用:



2. 第二步:找到靶基因CDS序列:
进入Genome Browser网站(网址:https://genome.ucsc.edu/),以TP53为例,输入“TP53”:

选用MANE select的序列:


点击后进入新的页面,再点击:Genomic sequence:

进入新的页面后,勾选”CDS”,最后点击submit即可

最后得到TP53的CDS,可见以起始密码子ATG开头,终止密码子TGA结尾:

复制序列,并粘贴到SnapGene软件中。
3. 开始设计靶基因引物,以#30124为载体构建过表达,设计原则:
F primer:5´ -TACTTCCAATCCAATGCCACC ATGxxxxxxxxxxxxxx-3´
START target PCR oligo
其中,ATG为靶基因的起始密码子,xxxxxxxxxxxxxx为靶基因ATG后面的序列,一般选15-20个bp即可,根据Tm值调整PCR oligo长度,遵循一般PCR引物设计原则。
比如笔者设计TP53 F primer,

根据选定的序列,完整设计:
TP53 F primer:5´ -TACTTCCAATCCAATGCCACC ATG GAGGAGCCGCAGTCAGATCC – 3‘
反向引物设计原则:
Reverse primer 5´-TTATCCACTTCCAATG TTA TTA xxxxxxxxxxxxxxxx-3´
Stop Stop target PCR oligo
注意,在设计反向引物时,需要把CDS序列的终止密码子去掉。比如在TP53 CDS序列末端,选定PCR oligo,切记勿选择TGA终止密码子:

最后,设计完成反向引物:
TP53 R primer 5´-TTATCCACTTCCAATG TTA TTA GTCTGAGTCAGGCCCTTCTGTCTTGAAC-3´
最终得到TP53的正反向引物,交付公司合成即可:
TP53 F primer:5´ -TACTTCCAATCCAATGCCACC ATG GAGGAGCCGCAGTCAGATCC – 3‘
TP53 R primer 5´-TTATCCACTTCCAATG TTA TTA GTCTGAGTCAGGCCCTTCTGTCTTGAAC-3´
第四步:酶切线性化载体,跑核酸胶回收。
选用SspI酶(NEB)对30124进行线性化,切胶回收线性化片段。
酶切体系:

第五步:提取选定细胞的总mRNA(参考先前教程),把靶基因CDS片段通过设计的引物P下来,然后跑核酸胶回收。
PCR反应体系,根据实验室情况,选用高保真酶,笔者实验室选用诺维赞的P510高保真酶,反应体系如下:

第六步:对回收的线性化30124载体和TP53-CDS片段进行LIC前预处理:
(1) 线性化30124预处理:

(PCR仪孵育: 22°C 30 minutes ;然后 75°C 20 minutes。)
第七步:LIC连接
在第六步预处理完成的#30124载体和TP53-CDS,即可进行LIC连接:

(PCR仪孵育: 22°C 30 min ;然后 75°C 20 min。)
第八步:DH5α感受态转化,可根据实验室情况选用化学感受态细菌:
转化程序:
(1).-80°C取出50µLDH5α感受态细菌,冰中融化,约10-15min;
(2).加入LIC连接完成的构建载体,冰中孵育30min;
(3)42°C,45sec 热击;
(4)再冰中孵育10-15min;
(5)在含有氨苄抗性的LB板中,均匀涂抹,倒置,37°C孵育过夜;
(6)14-16h后,挑单克隆,摇菌送测序验证。
每日一言:爱自己!!!做科研!!! 每文格言。(培根,英国散文家,哲学家):“如果问在人生中,最重要的才能是什么,第一,无所畏惧;第二,无所畏惧;第三,还是无所畏惧。”
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