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CO-IP免疫共沉淀实验原理及详细步骤

发布于 2022-04-24 · 浏览 1.0 万 · IP 广东广东
这个帖子发布于 3 年零 8 天前,其中的信息可能已发生改变或有所发展。

入门必看:免疫共沉淀实验原理及详细步骤

研究蛋白之间相互作用必不可少的实验是免疫共沉淀(CoIP),常被用于鉴定特定蛋白复合物的中未知蛋白组分,因其具有可信度高的优点,在现在基础医学研究中广泛应用,本文将为您详解CoIP的实验原理和操作步骤,实验刚入门的同学必看哦。

一、实验目的

1)检测两种目标蛋白是否在体内相互作用;

2)找到与目标蛋白在体内存在相互作用的新蛋白。

二、实验原理

CoIP是利用抗原蛋白和抗体的特异性结合、以及“Protein A/G"特异性地结合抗体(免疫球蛋白)FC段的现象开发出来的方法。

目前多用Protein A/G预先结合在Argarose Beads上,使之与含有抗原蛋白的溶液(如细胞裂解液)及抗体(诱饵蛋白X抗体)反应后,Beads上的Prorein A/G就能通过抗体吸附诱饵蛋白X,诱饵蛋白X通过与靶蛋白Y相互作用将其从细胞裂解液中分离出来,从而达到免疫共沉淀的目的。


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三、实验材料

细胞、RIPA缓冲液(RIPA buffer)、偶联有Protein A/G的免疫磁珠(Protein A/G Beads)、诱饵蛋白X与靶蛋白Y的抗体、IgG对照抗体、移液枪、4度冰箱以及低温离心机等。

四、实验步骤(不同实验室略有差异)

1) 制备细胞裂解液:收集4x107细胞,用PBS洗涤后,加入1 ml RIPA buffer(含蛋白酶抑制剂),充分混匀,冰上裂解30 min;4℃,12000 rpm离心10 min,收集上清液。

2) 免疫共沉淀:在细胞裂解液中加入50 μl 50% Protein A/G Beads,4℃翻转混合孵育1 h进行预清除,离心后取0.5 ml上清液,加入3 μg诱饵蛋白X抗体,另取0.5 ml上清液加入等量同源的IgG抗体作为对照,4℃摇晃结合过夜;第二天每管加入50 μl 50% ProteinA/G Beads,4℃摇晃结合3 h;用RIPA Buffer洗涤5次,每次5 min。

3) Western Blot分析或MS质谱分析:沉淀中加入25 μl 2×SDS loading Buffer,煮沸10 min后离心取上清,用靶蛋白Y的抗体进行Western Blot分析,以检测目标蛋白是否存在相互作用;或进行MS质谱分析,以找到更多与诱饵蛋白X在体内存在相互作用的蛋白。


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五、实验心得体会

你可能做了很多Co-IP实验,经常遇到的问题是检测不到与诱饵蛋白X相互作用的靶蛋白Y,或者检测得到的信号太弱。

 出现以上问题的原因可能有:

1)裂解液中的去垢剂过于剧烈;

2)蛋白与蛋白之间的相互作用太弱或者不稳定。

  通常的解决办法如下:

1)降低去垢剂浓度或者更换去垢剂种类(SDS>Trition>NP40>Digitonin>CHAPS);

2)选择亲和力高的抗体以捕获更多的诱饵蛋白X从而捕获更多的相互作用蛋白;

3)通过细胞转染过表达的方式提高诱饵蛋白X的含量;

4)加入化学交联剂,增强诱饵蛋白X与相互作用蛋白的结合;

5)选择诱饵蛋白X或者相互作用蛋白含量高的样品进行免疫共沉淀实验。

最后编辑于 2022-10-09 · 浏览 1.0 万

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