【求助】电泳条带如何判断RNA完整性的好坏？

第一次提取细胞的RNA，测了纯度和完整性，但是结果很不理想，现在想问大侠们，我的操作需要注意哪些？
纯度检查：OD260/280在1.7-1.8之间，OD260/230却很低，在0.7-1.1；
理论上OD260/280在1.8-2.0之间，说明无蛋白质污染和抽提液成分残留，OD260/230>2，说明无小分子或盐等干扰杂质存在。
电泳图：
最上面是加样孔，从这张图来看，我的杂带这么多，请问这是和操作不当的哪些有关，用的是全式金Transzol提的，按照说明书的提取步骤来的,所使用的TIP头和EP管都是用DEPC水处理过的，提取步骤如下：
（1）吸去细胞培养液，1*PBS清洗一次
（2）每 10cm2加入 1mlTranszol,移液器吹打细胞使其脱落
（3）将内含细胞的裂解液转移至离心管中，用移液器反复吹吸直至裂解液中无明显沉淀
（4）室温静置5min
（5）每使用 1mlTranszol加0.2ml氯仿，剧烈震荡15秒，室温孵育3min
（6）1,0000g 4℃离心 15min
（7）取上层水相，加入0.5ml异丙醇（每使用 1mlTranszol取 400μl 水相），混匀，在 15-30℃条件下静止 10min。
（8）10,000g 4℃ 10min，去上清。
（9）加75%乙醇（处理过的DEPC水配置）洗涤沉淀，每使用 1mlTranszol加入 1ml75%乙醇。
（10）室温晾干沉淀约5-10min，加入50ul溶解液
（11）55-65度孵育10分钟，样品于-80℃保存。